細(xì)胞膜是細(xì)胞與外界環(huán)境的分界線，而膜蛋白（MPs）作為細(xì)胞的基本組成成分，介導(dǎo)許多關(guān)鍵過程，如信號轉(zhuǎn)導(dǎo)、成分傳輸、酶反應(yīng)、細(xì)胞之間的通信等。在生命科學(xué)領(lǐng)域，研究膜蛋白對于理解細(xì)胞功能、疾病機(jī)制及藥物開發(fā)具有重要意義。膜蛋白的表達(dá)與純化一直是研究中的難點，其復(fù)雜的結(jié)構(gòu)、疏水性、低表達(dá)量、易形成包涵體以及潛在的毒性使得傳統(tǒng)表達(dá)方法面臨諸多挑戰(zhàn)。而無細(xì)胞蛋白表達(dá)技術(shù)（ CFPS）的興起，為膜蛋白研究帶來了革命性的變革。

膜蛋白作為一類特殊的蛋白質(zhì)，其表達(dá)與純化過程尤為復(fù)雜。除了常見的問題外（比如：膜蛋白定位、跨膜蛋白疏水性、蛋白毒性、表達(dá)水平低等），還有以下一些挑戰(zhàn)：

稀有密碼子：部分膜蛋白基因含有稀有密碼子，這些密碼子不能被宿主細(xì)胞識別，導(dǎo)致多肽鏈合成不完-全，從而不能形成功能性膜蛋白。

易形成多聚體：膜蛋白在熱變性過程中容易形成多聚體，導(dǎo)致抗體無法識別或條帶分子量發(fā)生變化或扭曲，從而影響實驗結(jié)果。

提取方法復(fù)雜：由于膜蛋白與膜結(jié)合緊密，不易從膜上洗滌下來，特別是跨膜蛋白，具有多重跨膜結(jié)構(gòu)域，提取分離困難。目前常用的提取方法包括超速離心、密度梯度離心等，但每種方法都有其局限性。

檢測難度大：膜蛋白在樣品中的表達(dá)量通常不高，在總蛋白中占比較低，用總蛋白檢測時，目標(biāo)蛋白含量可能低于檢測下限，無法檢測到。此外，膜蛋白的western Blot實驗也面臨諸多挑戰(zhàn)，如條帶不清晰、分子量不對或條帶扭曲等。

對于體外結(jié)構(gòu)研究來說（如X射線衍射、核磁共振光譜或交聯(lián)方法等）CFPS已經(jīng)成為一個日益重要的研究領(lǐng)域，并且它在其他領(lǐng)域也有很高的潛力，包括工業(yè)蛋白質(zhì)生產(chǎn)等。一般來說，CFPS可以在不使用完整活細(xì)胞的情況下進(jìn)行體外蛋白的合成，只需要合成系統(tǒng)中包含核糖體和氨基酰tRNA合成酶等核心蛋白質(zhì)表達(dá)機(jī)制的細(xì)胞提取物，同時提供能量恢復(fù)系統(tǒng)、氨基酸、NTP、tRNA和DNA等必需的前體即可。與重組蛋白生產(chǎn)相比，它有以下幾個主要優(yōu)勢：

• CFPS可以表達(dá)對細(xì)胞有損害的蛋白質(zhì)或肽，包括膜整合蛋白、疫苗等；

• CFPS系統(tǒng)允許通過不同的策略有效地納入非天然氨基酸（NSAA）；

• CFPS的蛋白純化過程可簡化為一兩個親和力純化步驟，表達(dá)后的提取物也可以直接應(yīng)用于下游工作；

• CFPS過程中免去了許多耗時和關(guān)鍵的步驟（比如細(xì)胞培養(yǎng)）；

• CFPS允許在開放系統(tǒng)中直接解決降解、錯誤靶向或不溶性表達(dá)等問題，允許獨立于細(xì)胞活力或生長的情況下優(yōu)化蛋白質(zhì)生產(chǎn)。

圖1:無細(xì)胞蛋白表達(dá)技術(shù)合成膜蛋白的實驗方案

CFPS系統(tǒng)是膜蛋白合成的一種新的核心平臺。其在人工疏水環(huán)境中的表達(dá)允許膜蛋白的共翻譯溶解和折疊，如納米膜或膠束。在沒有疏水化合物的情況下，合成的膜蛋白可定量沉淀，同時仍然可以保留很大一部分折疊的結(jié)構(gòu)元素。即使是復(fù)雜的膜蛋白（比如大型轉(zhuǎn)運體），也可以在幾個小時內(nèi)合成大量此類沉淀物。沉淀物可以在洗滌劑中溶解或重組成膜，以進(jìn)行后續(xù)的結(jié)構(gòu)或功能分析。

我們知道，G蛋白偶聯(lián)受體（GPCR）在細(xì)胞-細(xì)胞信號傳導(dǎo)過程中發(fā)揮著核心作用，是人類基因組中最大的膜蛋白群體，大約35%的商業(yè)藥物是針對這些蛋白質(zhì)。對G蛋白偶聯(lián)受體進(jìn)行結(jié)構(gòu)研究的先決條件是制備以毫克蛋白質(zhì)為單位的高度濃縮、穩(wěn)定且具有生物活性的樣本。傳統(tǒng)的表達(dá)方法會存在很多問題，而CFPS可以規(guī)避這些問題?；谄溟_放性，允許研究人員向系統(tǒng)中添加物質(zhì)。這促進(jìn)了蛋白表達(dá)和溶解，允許快速篩選出最佳表達(dá)條件。

此外，膜基納米顆粒（如脂質(zhì)體、聚合物和脂質(zhì)納米顆粒）的表面改性，以及靶向分子（如結(jié)合蛋白）的修飾是治療材料設(shè)計的重要一步。然而，這種修飾可能既昂貴又耗時，需要細(xì)胞宿主進(jìn)行蛋白質(zhì)表達(dá)，將會花費漫長的純化和共軛時間來將蛋白質(zhì)附著在納米載體表面，這最終限制了有效蛋白質(zhì)共軛納米載體的發(fā)展。目前，已有研究使用CFPS系統(tǒng)來快速創(chuàng)建蛋白質(zhì)共軛膜基納米載體。使用這種方法，多種類型的功能結(jié)合蛋白，包括affibodies、scFvs等，都可以通過無細(xì)胞表達(dá)，并在一個鍋中結(jié)合到脂質(zhì)體上。此外，可以進(jìn)一步擴(kuò)展到其他納米顆粒，包括聚合物和脂質(zhì)納米顆粒，適用于多種共軛策略，包括表面附著以及集成到納米顆粒膜中。利用這些方法，證明了雙特異性人工抗原呈遞細(xì)胞的快速設(shè)計，并增強了脂質(zhì)納米顆粒貨物的體外輸送。預(yù)計這種工作流程將能夠快速生成基于膜的輸送系統(tǒng)，并增強我們創(chuàng)建細(xì)胞模仿療法的能力。

圖3：膜基納米顆粒的快速合成

1. Schmidt P, Bender BJ, Kaiser A, et al. Improved in Vitro Folding of the Y2 G Protein-Coupled Receptor into Bicelles. Front Mol Biosci. 2018;4:100. Published 2018 Jan 17. doi:10.3389/fmolb.2017.00100.

2. Goncharuk MV, Vasileva EV, Ananiev EA, et al. Facade-Based Bicelles as a New Tool for Production of Active Membrane Proteins in a Cell-Free System. Int J Mol Sci. 2023;24(19):14864. Published 2023 Oct 3. doi:10.3390/ijms241914864.

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4. Peruzzi JA, Vu TQ, Gunnels TF, Kamat NP. Rapid Generation of Therapeutic Nanoparticles Using Cell-Free Expression Systems. Small Methods. 2023;7(12):e2201718. doi:10.1002/smtd.202201718.